"justify"> 2. Діоксан
. Пропанол - 2
. Ацетон/Гексан (7: 3)
. Ацетон/Гексан (7: 4)
. Пропанол - 2/Діоксан (6: 4)
. Пропанол - 2/Діоксан (7: 3)
. Пропанол - 2/Діоксан (8: 2)
. Пропанол - 2/Гексан (5: 5)
. Пропанол - 2/Гексан (8: 2)
. Пропанол - 2/Гексан (9: 1)
. Пропанол - 2/Гексан (9,5: 0,5)
. Діоксан/Гексан (5: 5)
. Діоксан/Гексан (6: 4)
. Діоксан/Гексан (6: 5)
. Діоксан/Гексан (7: 3)
. Діоксан/Гексан (8: 2)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (5: 5: 1)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (5: 5: 2)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (7,5: 5: 1)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (10: 5: 1)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (12,5: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (5: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (6: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (7,5: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (10: 5: 1)
. Гексан/Діоксан/4-х хлористий вуглець (1: 1: 1)
. Гексан/Діоксан/4-х хлористий вуглець (1: 2: 1)
. Гексан/Діоксан/4-х хлористий вуглець (1: 2: 2)
Методика:
1. Підготовка пластинок. Позначення лінії старту, лінії фінішу;
2. Нанесення зразків на лінію старту ручним способом: на платівці олівцем відзначали точки, що лежать на відрізку, паралельному нижньому краю пластинки, і віддаленому від нього на таку відстань, щоб крапки не занурювалися в елюент (15 мм). Кількість точок було дорівнює числу аналізованих зразків. Потім на відмічені точки за допомогою мікрокапілярів наносили розчин аналізованих зразків, обсяг яких зазвичай був обмежений 5 мкл (обсяги розчинів наносили декількома дотиками, висушуючи між ними пластинку від розчинника). На платівку речовини наносилися в наступному порядку: Атропін, Цикломеду, Тропикамид.
. Елюювання (використовувалася висхідна тонкошарова хроматографія): після нанесення розчинів досліджуваних речовин пластинку поміщали в хроматографічну камеру, в якій на дні налитий шар елюента. Камеру герметизували для уникнення випаровування летючого елюента з поверхні пластинки в процесі хроматографування. Після того, як лінія фронту сягала достатньою для аналізу висоти, пластинку витягували і висушували.
. Перевірка: речовина поглинає в ультрафіолетовій області, тому детекцию здійснювали на платівці з флуоресцентним індикатором під ультрафіолетовим випромінюванням.
. Оцінка результатів: здійснювали вибір найбільш вдалих систем, що дають можливість у подальшому використовувати їх в методі ВЕРХ для розділення речовин (додаток 1). Результати були занесені в протокол.
Таким чином, в ході даної дослідницької роботи, були відібрані наступні системи:
1. Ефір
2. Пропанол - 2
. Пропанол - 2/Діоксан (6: 4)
. Пропанол - 2/Діоксан (8: 2)
. Пропанол - 2/Гексан (9,5: 0,5)
. Діоксан/Гексан (5: 5)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (10: 5: 1)
. Гексан/Діоксан/Пропанол - 2 (12,5: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (6: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (7,5: 5: 1)
. Гексан/Хлороформ/Пропанол - 2 (10: 5: 1)
. Гексан/Діоксан/4-х хлористий вуглець (1: 1: 1)
. Гексан/Діоксан/4-х хлористий вуглець (1: 2: 1)
токсикологічний атропін лікарський Тропикамид
Висновок
У ході даної роботи були розглянуті основні характеристики препаратів, які найчастіше використовуються для наркотизації, токсичність, механізм дії, а також були вивчені сучасні методи аналізу препаратів. Також була дана характеристика тонкошарової хроматографії, як методу аналізу препаратів цієї групи; була описана методика проведення аналізу методом ТШХ та проаналізовані отримані результати.
У результаті дослідницької роботи були обрані найбільш оптимальний системи для ВЕРХ.
У наш час часто використовуються лікарські засоби з метою наркотизації, оскільки даний вид «наркотиків» відносно дешевий і доступний. Так як насл...
