едставлені електронні мікрофотографії поверхні досліджених мембран. br/>В а - МФА; б - GS; в - В«ДюрапорВ»; г - В«МіфілВ».
Порівняльний аналіз динаміки швидкості фільтрації показав однотипність і зміни цього параметра для всіх вивчених фільтрів (рис. 3). Встановлено, що для складних полікомпонентних біологічних рідин вона визначається питомою пористістю мембрани, а також наявністю в фільтровану розчинах макромолекул білкової природи (рис. 4 ).
Неорганічні речовини і органічні низькомолекулярні компоненти істотно не впливають на швидкість фільтрації. p> Такий висновок справедливо тільки для слабозагрязненних розчинів. У цьому випадку зміна обсягу фільтрованої рідини описується рівнянням виду П… = О±П„ -1 , де П… в”Ђ обсяг профільтрованої рідини; О± в”Ђ коефіцієнт регресії; П„ в”Ђ час від початку фільтрації. br/>В
Рис. 3. Криві динаміки швидкості фільтрації сироваток плацентарної крові людини через мембрани В«МіфілВ». 1 - В« Дюрапор В»; 2 - GS; З - В«МіфілВ», 4 - В«Сарторіус В»; 5 ​​- МФА-1. Тут і на рис. 2 по осі абсцис П„ (в с), по осі ординат - П… (в мл). Рис. 4. Криві динаміки швидкості фільтрації сироваток плацентарної крові людини через мембрани В«МіфілВ». Концентрація сироваток: 1 - 100%. 2 -20%. Е - 10%. br/>
Можливість використаний і я фільтрів для медико-біологічних завдань визначається не тільки стерилізуючої ефективністю, продуктивністю, механічною міцністю, можливістю застосування різних способів стерилізації, а й відсутністю виділення токсичних компонентів у стерілізуемую рідина. Бажане токсичну дію матеріалу фільтрів В«МіфілВ» оцінювали в дослідах з культивування клітин і тканин. Використання як тест - об'єктів культуральних систем стало наслідком добре відомого факту гіперчутливості клітин in vitro до будь пошкоджуючим впливів у порівнянні з клітинами in situ. Проведено дослідження функціонального стану клітин в розвиваються культурах, вирощуваних у різних поживних середовищах, фільтрованих через оцінюваний фільтр, або в присутності матеріалу фільтра в культуральної системі. В останньому випадку відмиті і автоклавуватися фільтри (100 мг на 1 мл середовища) поміщали в посудину з середовищем і розвиваються культурами. Щодня протягом тижня досвідчені культури порівнювали з контрольними на предмет виявлення в них цитотоксичних змін. Усі культури досліджували прижиттєво мікроскопічно, частина з них фіксували і фарбували для гістологічного і гистохимического аналізу.
В В
Рис.5. Культури клітин і тканин, вирощені в присутності матеріалу мембрани В«МіфілВ» у живильному середовищі. br/>
1 - клітини лінії MDSK. Забарвлення гематоксиліном х16, 2 - клітини лінії МА; естеразной активність, що виявляється методом діазосочетаній. х40; 3 - культура тригеминального ганглія щура, 12 днів in vitro. Прижиттєва мікроскопія, фазовий контраст.х40. p> Функціональну оцінку культур проводили за такими параметрами: зміцнення клітин на...
