Теми рефератів
> Реферати > Курсові роботи > Звіти з практики > Курсові проекти > Питання та відповіді > Ессе > Доклади > Учбові матеріали > Контрольні роботи > Методички > Лекції > Твори > Підручники > Статті Контакти
Реферати, твори, дипломи, практика » Новые рефераты » Мікробіологічна діагностика і прогноз черевного тифу

Реферат Мікробіологічна діагностика і прогноз черевного тифу

















Реферат на тему:

В«Мікробіологічна діагностика і прогноз черевного тифуВ»


Мікробіологічна діагностика


Мікробіологічна діагностика черевного тифу грунтується на виділенні збудника з організму і виявленні специфічних антитіл. Для виділення збудника в початковому періоді хвороби досліджуються кров і в деяких випадках дуоденальне вміст, кістковий мозок, вміст розеол та ін матеріали; в пізні терміни, крім того, - випорожнення, сеча, спинномозкова рідина, гній. У разі смерті досліджується секційний матеріал. Посів мокротиння, поту, гною, спинномозкової, плевральної та ін рідин застосовується для з'ясування природи ускладнень.

Посів крові. Результати дослідження крові залежать від періоду і тяжкості хвороби, кількості взятої крові, якості поживного середовища. Найбільш часто (до 100%) гемокультура черевного тифу виділяється на 1-му тижні хвороби, на 2-3-му тижні відсоток позитивних знахідок знижується. Для підвищення ефективності дослідження деякі автори рекомендують за 15 хв. до взяття крона В«водити підшкірно 1 мл адреналіну в розведенні 1:1000, під впливом його, на думку ряду авторів, збудник, що знаходиться в селезінці, надходить у кров. Кров для посіву протягом першого тижня хвороби з дотриманням стерильності береться з ліктьової вени в кількості не менше 10 мл. У більш пізні терміни і під час рецидивів доцільний посів крові в кількості 15-20 мл. У дітей кров у невеликій кількості беруть з п'яти, пальця, мочки вуха. Кров засівається в рідку живильне середовище у співвідношенні не менше ніж 1: 10. p> З рідких поживних середовищ застосовуються: Рамотортл середу по 100, 150, 200 мл у флаконі: 10% жовчний бульйон по 100, 150, 200 мл у флаконі; бичача жовч по 5-10 мл в пробірці; мясопептонний бульйон з 1% глюкози під флаконах по 100, 150, 200 мл; стерильна дистильована або водопровідна вода в тих же обсягах. Поживним субстратом в останньому випадку служать продукти розпаду формених елементів крові. Найкращі результати виходять при використанні перших двох середовищ. При неможливості посіяти кров у ліжку хворого для попередження згортання 10 мл крові виливають у пробірку з 2 л. В«5% стерильного розчину лимоннокислого натрію. У лабораторії нітратна кров засівається в одну з вищевказаних середовищ. Для зменшення бактерицидних властивостей крові при неможливості провести посів на місці деякі автори рекомендують проводити посів кров'яного згустку. Кров з шприца виливається в стерильну пробірку. Утворився згусток після видалення стерильною піпеткою сироватки роздрібнюють стерильною скляною паличкою і засівають на одну з перерахованих середовищ. Посів крові міститься у термостат при 37 В° на 18-24 години. У позитивних випадках через цей термін (іноді пізніше) на середовищах з жовчю відзначається помутніння середовища або невеликий придонний осад; середу Рапопорта при зростанні черевнотифозних паличок мутніє і червоніє (освіта кислоти внаслідок розкладання глюкози або маніту). З флакона проводять висів на чашку з твердою диференціальної середовищем з лактозою (Ендо, Левіна та ін.) Висів на середу Плоскірева (бактоагар Ж) проводити не рекомендується, оскільки через різку зміни умов харчування черевнотифозними паличка не росте або росте дуже погано. Одночасно готують і вивчають мазки, пофарбовані за Грамом, рухливість в висячої або роздавленої краплі. У випадках зростання чистої культури виробляють посів на косою агар та середовища Гісса. Всі посіви ставлять в термостат при 1 В° 37 В° до наступного дня. При виявленні чистої культури рухливих, грамнегативних паличок, почервоніння середовища Рапопорта без газоутворення дається попередній позитивний висновок про виділення збудника черевного тифу.

На другий день дослідження вивчають колонії на диференціальної середовищі і прозорі, безбарвні або кольору середовища колонії пересівають на В«короткий строкатий ряд В»(рідкі або напіврідкі середовища з лактозою, глюкозою і косою агар) або на Ресселя середовище для подальшого вивчення. Використання напіврідких середовищ Гісса дозволяє визначити рухливість мікробів (на лактозі), не вдаючись до висіву на середу Пєшкова. Отриману на косому агарі чисту культуру досліджують в забарвлених за Грамом мазках і визначають рухливість мікроба. За виявленні грамнегативних, рухливих паличок виробляють посів: на В«довгий строкатий рядВ» (Середовища Гісса з лактозою, глюкозою, манітом, мальтозою, сахарозою); на косий агар, на мясопептонний бульйон з вкладеними під пробку смужками фільтрувальної паперу, змоченими насиченим розчином оцтово-кислого свинцю (для визначення сірководню) і 12% розчином щавлевої кислоти (для визначення індолу). Одночасно на предметному склі ставлять орієнтовну реакцію аглютинації і при позитивному результаті для визначення титру розгорнуту аглютинацію з відповідними специфічними сироватками.

Якщо після першого висів...


сторінка 1 з 5 | Наступна сторінка





Схожі реферати:

  • Реферат на тему: Внутрішнє середовище організму. Кров, основні функції, фізіологічне значен ...
  • Реферат на тему: Лікування та профілактика черевного тифу
  • Реферат на тему: Сенсори кров'яного тиску
  • Реферат на тему: Вимірювання кров'яного тиску
  • Реферат на тему: Правила підготовки до лабораторних досліджень крові. Умови забору капілярн ...