Теми рефератів
> Реферати > Курсові роботи > Звіти з практики > Курсові проекти > Питання та відповіді > Ессе > Доклади > Учбові матеріали > Контрольні роботи > Методички > Лекції > Твори > Підручники > Статті Контакти
Реферати, твори, дипломи, практика » Статьи » Визначення впливу води зі зміненим ізотопним складом на функціональні особливості імунокомпетентних клітин людини

Реферат Визначення впливу води зі зміненим ізотопним складом на функціональні особливості імунокомпетентних клітин людини





етерофазна розчин. На дно випадав осад червоного кольору з еритроцитів і тромбоцитів, т. К. Їх щільність вище щільності фіколла-урографіну. Надосадова рідина розділилася на дві фази: прозора - фіколл-урографін і червона рідина, що є плазму крові. На межі розділу цих двох фаз утворилося кільце з біло-жовтих згустків, що містить лімфоцити. За допомогою Мікродозатори проводився збір міжфазного кільця, вміст якого було поміщено в окремий стерильний Еппендорф для подальшої відмивання клітин від домішок. Для відмивання клітин був доданий фізрозчин в кількості 500 мкл, а потім Еппендорфа знову були поміщені в центрифугу на 10 хв зі швидкістю обертання 400 об/хв. Після цього відбирали надосадову рідину. Виділені лімфоцити цільної крові можна зберігати при температурі мінус 20 0С. На малюнку 2 представлена ??фотографія виділених лімфоцитів.


Малюнок 2 - Фотографія виділених лімфоцитів, зроблена на оптичному мікроскопі БІОМЕД - 6 Вар 3 при збільшенні 1: 1000


2.3 Інкубування лімфоцитів у воді зі зміненим ізотопним складом і визначення однониткових розривів ДНК


Лімфоцити, ізольовані з крові, инкубировались протягом 16 годин при кімнатній температурі у фізіологічному розчині, приготованому на воді з пониженим вмістом дейтерію (40 ± 2 ppm) і звичайній воді (150 ± 2ppm). Це необхідно для того, що б з'ясувати, як впливає легка вода на життєздатність клітин in vitro. Для з'ясування впливу часу інкубування на життєздатність лифоцитов, останні вимочувалися в физрастворе, приготованому на легкій воді протягом 3, 8, 16, 24 годин. Проведені експерименти показали, що при часі інкубування 16 годин спостерігалася найвища ефективність репарації ДНК.

Для інкубування дві проби лімфоцитів, виділених з крові здорових і хворих ВПР ЧЛО донорів, замочували в 1 мл фізіологічного розчину на легкій воді, а дві інші аналогічні проби замочували у фізіологічному розчині на звичайній воді.

Для лізірованіе клітин був приготований 4,5м розчин сечовини. Сечовина є детергентом, використовується в біологічних і біохімічних лабораторіях, являє собою м'який реагент, який використовуються для руйнування мембрани клітин (лізису клітин) і трансформації внутрішньоклітинного матеріалу в розчинну форму. Детергенти використовуються в основному для руйнування міжбілкового, білково-ліпідних і межліпідних зв'язків, денатурації білкових структур, запобігання неспецифічного зв'язування в імунохімічних аналізах і кристалізації білків. Після інкубування в усі проби було додано по 0,2 мл 4,5м розчину сечовини. Клітини ціалізуватися протягом 10 хв при кімнатній температурі. У цьому випадку відбувається руйнування оболонки лімфоцитів, тим самому вивільнення молекули ДНК.

Лізати клітин в експериментальних зразках піддавалися лужній обробці протягом 30 хв при 0 0С, а потім 60 хвилин при 15 0С. Для цього в усі проби додавалося по 0,2 мл 0,1% HCl. Далі зразки піддавалися інтенсивному струшуванні на Вортекс. Цим досягалося розплітання молекул ДНК.

Після лужної обробки лизатов в зразки додавався розчин бромистого етидію. Ця хімічна речовина з групи фенантрідінов (3,8-діаміно - 6-етил - 5-фенілфенантрідіумбромід), широко застосовується для флуорісцентной маркування ДНК. При опроміненні бромистий етидієм флюоресцирует помаранчевим кольором. Є інтеркалірующім агентом, т. Е. Речовиною, здатною вбудовуватися між основами ДНК, його Інтеркаляція супроводжується розкручуванням суперспіралізованних ділянок ДНК. Використовується в якості барвника для детектування дволанцюжкових молекул ДНК і РНК.

Інтенсивність флюоресценції отриманих зразків визначалася на Спектрофлуориметр Флюорат - 02-Панорама в діапазоні довжин хвиль 540-740нм.

Кількість однониткових розривів ДНК оцінювалося по відношенню величин флюоресценції контрольних і експериментальних зразків. Для зняття фонової флуорисценцией підготували зразок, що містить всі компоненти як у експериментальних зразках і в тій же концентрації, але без молекул ДНК. Розміщуємо зразок у кюветноє відділення. На комп'ютері відкриваємо програму «Панорама», в ній вибираємо режим флуориметрії. Потім задаємо довжину хвилі збудження - 540 нм, спектральний діапазон реєстрації 540-740 нм. Далі натискаємо кнопку старт. Вимірювання флуоресценції в даному діапазоні йде близько 2 хвилин для кожного зразка. Отримані графіки експортуємо безпосередньо в електронну таблицю Excel для подальшого аналізу результатів.

У ряді експериментів використовувався рекомбінантний людський фактор некрозу пухлини hTNF?. При замочуванні лімфоцитів здорових донорів у фізіологічному розчині на звичайній воді і воді з пониженим вмістом дейтерію в середовищі створювалася концентрація hTNF? рівна 10 нг/мл.



2.4 Вивчення впливу води...


Назад | сторінка 18 з 22 | Наступна сторінка





Схожі реферати:

  • Реферат на тему: Дезінтеграція як інструмент для спрямованого руйнування клітин і клітинних ...
  • Реферат на тему: Т-і В-лімфоцити. Рецептори, субпопуляції. Кооперація клітин в імунній від ...
  • Реферат на тему: Методи визначення концентрації розчиненого кисню у воді
  • Реферат на тему: Визначення вмісту металів у воді
  • Реферат на тему: Фотометричне визначення заліза в питній воді