инкторіальних і морфологічними особливостями змушує перевірити їх спиртостійкі шляхом повторного знебарвлення пофарбованого за Ціль-Нільсеном мазка 96 В° спиртом протягом 5-10 хвилин і додаткової забарвлення 0,5% о розчином метиленової синьки. Якщо в препараті є туберкульозні мікобактерій, що володіють, крім кислотостійке, і спиртостійкі, вони після додаткового знебарвлення спиртом залишаться червоними. Якщо червоні при фарбуванні за Ціль-Нільсеном бактерії після перефарбовування втратять свою первісну забарвлення і перетворяться на сині або хоча б частково змінять свій червоний колір, то це буде свідчити про те, що ці бактерії кислототривкі, але спіртоподатлівие, тобто не туберкульозні. При фарбуванні мазків мокротиння на туберкульоз користуються для знебарвлення 3% солянокислим спиртом, що дає можливість відразу виявляти кисло-та спиртостійкі виявлених у препараті бактерій.
Дослідження мокротиння методом флотації. У силу недостатньої чутливості бактеріоскопічного методу туберкульозні мікобактерій, перебуваючи у вихідному матеріалі іноді в убогому кількості, не можуть бути виявлені звичайним методом фарбування по Ціль-Нільсеном. При застосуванні ж більш чутливого методу флотації ці мізерні кількості туберкульозних мікобактерій можуть бути виявлені.
Цей метод заснований на тому, що при струшуванні двох рідин з різним питомим вагою рідина з більш легким у слушною вагою піднімається вгору і захоплює за собою туберкульозні мікобактерій, які у зваженому стані в суміші.
Мокроту в кількості від 1 до 10-15 мл (не більш ніж) переливається в пляшку або колбу ємністю в 250 мл, куди додається на око рівну кількість 0,5% розчину їдкого натру або калі, і протягом 5-10 хвилин ретельно струшується для розчинення грудочок слизу і гною, Потім для повної гомогенізації ставиться на водяну баню при 56 В° на 30 хвилин. До гомогенізовані матеріалу додається приблизно 100 мл дестіллірованной води і 0,5 мл ксилолу або бензину. Всі вміст знову ретельно струшується протягом 5-10 хвилин, потім в пляшку додається ще близько 100 мл дестіллірованной води до шийки пляшки. Останню залишають стояти при кімнатній температурі на 20-30 хвилин. Після стояння на поверхні рідини утворюється слівкообразний кільце.
Піпеткою відсмоктується частина утворився у горлечка пляшки білого кільця і ​​наноситься на два предметних скла, заздалегідь розкладених на великому склі, покриваючому нагріту до 70-80 В° водяну баню. На підсушений мазок наносять ще раз кілька крапель з кільця. Таке нашарування проводиться в загальному 5-6 разів до використання, всього кільця, причому кожна крапля підсушується до нанесення наступної.
Мазки залишаються до повного висихання на підігрітому склі, покриваючому водяну лазню, де вони і фіксуються, а потім їх піддають забарвленні за Ціль-Нільсеном з тією різницею, що основною розбавлений фуксин наливається на предметні скла, знаходяться на водяній бані, на 10 хвилин.
Промивні води шлунка попередньо НЕ Центрифугують, а флотірующій все добуте від хворого кількість рідини. До отриманої рідини додається 1-2 мл 0,5% їдкого натру, бутель струшують протягом 5 хвилин (але не ставиться на водяну баню), потім додається 0,5 мл бензину. Надалі матеріал обробляється так само, як і мокрота.
В
ДОСЛІДЖЕННЯ Плевральні ексудатах
За зовнішньому вигляду розрізняють такі типи ексудату, найчастіші у туберкульозних хворих при ексудативному плевриті: серозний, серозно-геморагічний, серозно-гнійний, гнійний, хілезний.
Найбільш цінним дослідженням в ексудаті є підрахунок клітинної формули рідини, яка дає уявлення про їхній зміст в тому чи іншому ексудаті.
Підрахунок клітинної формули особливо цінно мати при повторних аналізах, інакше може вислизнути напрям змін, наприклад, зростання нейтрофілів в лімфоцитарному, серозному ексудаті або збільшення лімфоцитів в рідині еозинофільного характеру. Для характеристики клітин Н. А. Шмельов і Е. Л. Вольфсон пропонують користуватися трьома видами забарвлення: вітальної, оксидазної і азуреозіновой. Найбільш простий з них є забарвлення за способом Романовського азуреозіновой сумішшю. Приготована фарба наливається на фіксований мазок на 6-8 хвилин, але не більше. Потім препарат змивається водою і висушується на повітрі. Процентне співвідношення окремих видів клітинних елементів обчислюється з підрахунку 200 клітин.
Мазки з ексудату готують за наступною методикою: доставлена ​​прозора рідина центрифугируется (з каламутних і тим більше гнійних рідин препарат готується без центрифугування); після центрифугування рідину з пробірки швидко зливається і з осаду готуються мазки. Потім мазки висушують на повітрі, фіксують в метиловий спирту протягом 3-5 хвилин і фарбують по Романовським. Н. А. Шмельов пропонує для дослідження ексудатів користуватися вітальним способом забарвлення. Цей метод дозволяє найбільш швидко до повноцінно досліджувати клітини в порожнинних рідинах. Його перевага ...
