групі, що знаходиться на тому ж раціоні, що й контрольна, Випоюють пребіотіческій препарат Лактусан російської фірми «Феліцата», що представляє собою концентрат лактулози (дисахарид - галактоза + фруктоза). Концентрація водного розчину лактулози (1 мл / л) була підібрана з урахуванням нормального функціонування кишечника і з метою стимуляції зростання знаходиться в травному каналі курчат корисної мікрофлори.
На третій і сьому добу від початку досвіду з кожної групи відбирали по 3 курчати для патолого-морфологічних та мікробіологічних досліджень. В асептичних умовах відбирали зоб, ділянка товстого кишечника з двома сліпими відростками і прямою кишкою. Їх вміст (точну наважку) ретельно розтирали з фізіологічним розчином натрію хлориду і згідно з методичними рекомендаціями [6] готували наступні десятикратні розведення (10-1; 10-2; 10-3; 10-4; 10-5; 10-6; 10-7). Для виділення і
культивування бактерій виробляли посіви досліджуваного матеріалу на живильні середовища: для ентеробактерій - на вісмут-сульфітний агар, агар Ендо, середовища Плоскирева, Сіммонса і Левіна; для ентерококів - на желточно-сольовий агар; для гемолізуючих форм - на 5%-ний кров'яний агар; для дріжджоподібних грибів - на агар Сабуро. За E. coli проводили скринінг гемолітичних, лактозонегативних і зі зниженою активністю ферментативної форм. Для культивування лакто-і біфідобактерій використовували живильне середовище (рН=6.8) наступного складу: 30.0 г панкреатичного гідролізату казеїну, 5.0 г екстракту пекарських дріжджів, 7.5 г глюкози, 2.5 г лактози, 0.5 г цистеїну, 2.5 г натрію хлориду, 0,5 г магнію сульфату семиводного, 0.5 г кислоти аскорбінової, 0.3 г натрію ацетату трехводного, 0.75 г агару. Число колоній визначали після тридобової інкубації посівів при температурі 37 ° С. З колоній готували мазки і фарбували їх за Грамом. Також готували мазки-відбитки слизової оболонки зоба, сліпого відростка і прямої кишки. Після висушування їх фарбували по Граму і досліджували під мікроскопом при иммерсионной системі [7]. Мікроскопія забарвлених мазків-відбитків дозволяла виявити не тільки наявність, але й орієнтовно оцінити адгезію молочнокислих бактерій на епітеліальних клітинах слизової оболонки. Умовно виділяли три ступеня обсіменіння слизових оболонок: слабку - до 20 мікробних тіл; середню - від 20 до 40 мікробних тіл; високу - більше 40 мікробних тіл у полі зору. При статистичному аналізі достовірність різниці між порівнюваними величинами числа вирослих колоній визначали по аргументу Стьюдента (td). Різниця вважалася достовірною при р <0.05 з подальшою градацією до р <0.001. Отриманий результат КУО переводили в десятковий логарифм числа.
Результати досліджень
На розтині грудної та черевної порожнин курчат-бройлерів яких візуальних патологічних змін не виявлено.
При мікроскопічному аналізі бактеріального пейзажу травного каналу тридобових курчат-бройлерів встановлено, що колонізація товстого кишечника сталася трьома основними групами мікроорганізмів - лактобактеріями, біфідобактеріями і бактеріями групи кишкової палички (табл. 1).
Таблиця 1
Мікробний пейзаж травного каналу тридобових курчат, lg КУО / г
Г Руппі бактерій
Контрольна група
Досвідчена група
...
