рикореневу зону рослин оцінювали за освітою мікроколоній бактерій у поверхні кореня на 3-14-у добу вирощування проростків. На 15-у добу у сіянців відокремлювали кореневу систему і досліджували наявність на ній бактерій в давлених мікропрепаратах, забарвлених метиленовим синім. Вміст мікроорганізмів з кожного досліджуваного штаму аналізували в кореневому чехлике, зоні клітинних поділів, зоні розтягування, та зону всмоктування і в провідній зоні. Експерименти проводили в 20-і кратної біологічної повторності.
Результати та їх обговорення
Використання методу вирощування проростків рослин в напіврідкому агарі, інокулював мікроорганізмами, дозволяє за відносно короткий період часу порівняти здатність досліджуваних бактерій колонізувати поверхню кореня і розмножуватися в ризосфері. У контрольному варіанті (насіння висаджені в голодний агар без внесення мікроорганізмів) в товщі агару ріст колоній не спостерігалося, всі зони кореня проглядалися чітко (рис. 1).
а б
Рис. 1. Корінь (зона кореневих волосків) Cucumis sativus L. сорту «Фенікс плюс» вирощеного в стерильних умовах (а - х 8; б - х 98)
У дослідному варіанті при внесенні в живильне середовище штаму S. cerevisiae на 2-у добу навколо коренів рослин утворювалося видиме хмара колоній (рис. 2 а - г). Штам S. cerevisiae колонізував товщу агару по всій довжині кореня, починаючи з його базальної частини: провідну зону, зону всмоктування (зону кореневих волосків), зону розтягування. У апікальної частини кореня колонізація виявлялася менш активно. На 3 - і добу культивування рослин хмара колоній навколо всіх зон кореня мало діаметр 1-2 мм (рис. 2 а, б). Із збільшенням часу культивування до 14-і доби інтенсивність колонізації прикореневої зони мікроорганізмами зростала - колонії ставали більшими. У різних зонах кореня діаметр хмари колоній відрізнявся за розміром (рис. 2 в, г). Так, у зоні кореневого чохлика діаметр хмари колоній в середньому склав 1 мм, в зоні діляться клітин - 2 мм, в зоні кореневих волосків - 5 мм, в провідній зоні - 3 мм. Через високу щільність хмари колоній мікроорганізмів навколо коренів, кореневі волоски не проглядалися. Микроскопирование давлених препаратів кореня показало наявність клітин S. cerevisiae в різних його зонах (рис. 2 д). Відмінностей в колонізації коренів огірків у сортів «Конкурент» і «Фенікс плюс» не виявлено.
а б
в м
д
Рис. 2. Колонізація прикореневого простору огірків сорту «Конкурент» штамом S. cerevisiae 75: а - 3 добу культивування (х 8), б - 3 добу культивування (х 98), в - 10 добу культивування, г - 10 добу культивування (х 98 ), д - роздавлений препарат на 14 добу культивування (х 10)
Результати проведених раніше досліджень показали, що штами L. casei 6 і L. plantarum 20 надають стимулюючу дію на ріст проростків огірків (Rzevskaya, 2013), проявляючи високу антагоністичну активність щодо широкого спектра фітопатогенних мікроорганізмів. При внесенні в голодний агар як штаму L. casei 6, так і штаму L. plantarum 20 навколо коренів огірків обох випробуваних сортів на 3-ю добу з'являлося хмара дрібних колоній (рис. 3, 4).
Штам L. casei 6 колонізував поверхню кореня по всій його довжині (рис. 3-а). ...
