си мікроорганізмів ми варіювали концентрацію легкої води в середовищі росту від 0 до 100% з кроком в 25%. Як джерело вуглецю використовували сахарозу (С 12 Н 22 Про 11) і гексадекан (С 16 Н 34). На першому етапі культивування проводилося на мінеральному середовищі при температурі 25? С, де джерелом вуглецю була сахароза. Концентрація легкої води в колбах з мінеральною середовищем збільшувалася з кроком в 25%.
Як видно з малюнка 6, найбільша кількість біомаси спостерігається при культивуванні культури В2 в середовищах з вмістом легкої води в концентраціях 25% і 100%. У середовищах з вмістом легкої води в концентрації 50% і 75% концентрація біомаси незначно менше порівняно з 25% і 100% легкої води в середовищі, але перевищує кількість біомаси у порівнянні з контролем.
Малюнок 6 - Концентрація біомаси клітин культури В2 на середовищі з сахарозою
На другому етапі суспензією клітин взятої з кожної колби першого етапу інокулював колби з мінеральною середовищем де в якості джерела вуглецю служив гексадекан з відповідною концентрацією легкої води до значення оптичної щільності в діапазоні рівному 0,075-0,1 умовної одиниці.
Малюнок 7 - Концентрація біомаси клітин культури В2 на середовищі з гексадеканом
За отриманими даними, показаним на малюнку 7 виявлено, що найбільше значення концентрації біомаси в процесі культивування досягається при концентраціях легкої води в середовищі рівних 50% і 75%. Значення кількості біомаси при 50% легкої води дорівнює 1,4 г/л, що в 2,5 рази більше ніж у контролі. При концентрації легкої води рівній 75% накопичення біомаси клітин одно 1,1 г/л, це в 2 рази більше ніж у контролі. Виходячи з представлених даних можна зробити висновок, що для найбільш швидкого накопичення біомаси в процесі культивування необхідно додавання в середовище зростання легкої води в концентрації 50%.
3.4 Вплив різної концентрації легкої води на показник гідрофобності бактерій виду Rhodococcus erythropolis штам В2
Для оцінки впливу ізотопного складу води на показник гідрофобності родокока, варіювали концентрацію легкої води в середовищі росту від 0 до 100% з кроком в 25%. Як джерело вуглецю використовували сахарозу (С 12 Н 22 Про 11) або гексадекан (С 16 Н 34). Культивування проводилося протягом 6 діб.
Рисунок 8 - Показник гідрофобності клітин на середовищі з сахарозою
Як видно з малюнка 8 максимальна гидрофобность клітин (10%) зареєстровано в середовищі зі 100% вмістом легкої води, мінімальна в середовищі з вмістом 75% легкої води, решта результати займали проміжне значення. Таким чином, залежність ПГ клітин від ізотопного складу водного середовища культивування носить не лінійний характер, гідрофобність клітин значно не змінюється.
Рисунок 9 - Показник гідрофобності клітин на середовищі з?? ексадеканом
Як видно з даних представлених на малюнку 9, ПГ істотно не відрізняється. Тобто видно незначне зміни ПГ від ізотопного складу води в середовищі. Оскільки різниця ПГ в середовищах з різними концентраціями легкої води мінімальна і сильно не відрізняється, то не можна судити про достовірні зміни ПГ від ізотопного складу води в середовищі росту.
3.5 Вплив гідролізату м'яса ферментативного у складі середовища на накопичення біомаси бактерій
Ключовим завданням культивування нефтеокисляющих мікроорганізмів є збільшення виходу біомаси. З цією метою досліджували ефект включення до складу середовища гідролізату м'яса ферментативного (ГМФ). ГМФ був обраний як стимулюючої добавки як додаткове джерело широко кола факторів росту (переважно поліпептидів і амінокислот).
Для досвіду використовувалося 10 конічних колб з освітленої витяжкою нітроамофоски з розрахунку 8 г/л (на водопровідній воді) і сахарозою 14 г/л. У середу вносився гідролізат м'яса ферментативний в концентраціях: 10 г/л; 1 г/л; 0,1 г/л. Приготовлені середовища інокулював 0,5 мл суспензії клітин Rhodococcus erythropolis В2 змитих з мясопептонного агару (МПА) до стартовою ОП=0,05-0,07 ум. од. Культивування проводилося протягом 7 діб на орбітальній гойдалці при 100 об/хв. Після закінчення культивування відбиралося по 10 мл суспензії клітин під зважені пробірки для вагового визначення концентрації біомаси. Дослід проводився в 2 паралелях.
Рисунок 10 - Залежність кількості клітин від концентрації ГМФ
В якості контролів використовували інокулірованую середу без ГМФ і середу з ГМФ без внесення біомаси. Залежність виходу біомаси від концентрації ГМФ в середовищі представлені на...
