в термостат з температурою 37 В° С. Через 16 - 24 год після ретельного перемішування з допомогою бактеріологічної петлі (діаметр 0,4-0,5 мм) або пастерівської піпетки проводять посів з середовища збагачення в чашки Петрі з попередньо підсушеної середовищем Ендо, БФА, Плоскірева, Левіна або вісмут-сульфіт-агар (за вибором). p> Чашки із посівами поміщають у термостат з температурою 37 В° С; посіви переглядають через 16 - 48 год, на вісмут-сульфіт-агарі - через 24 - 48 год
На середовищі Ендо бактерії з роду сальмонел утворює безбарвні або з рожевим відтінком колонії.
На середовищі БФА сальмонели утворюють великі, гладкі, червонуватого відтінку прозорі колонії (колонії сальмонели, як і на середовищі Ендо - дрібні). Бактерії групи кишкової палички утворюють колонії жовто-зеленуватого кольору. Бактерії групи протея дають зростання через 72 ч.
На середовищі Плоскірева сальмонели ростуть у вигляді безбарвних колоній, але колонії більш щільні і трохи меншого розміру, ніж на середовищі Ендо.
На середовищі Левіна сальмонели ростуть у вигляді прозорих, блідих, ніжно-рожевих або рожево-фіолетових колоній.
На вісмут-сульфітному агарі сальмонели ростуть у вигляді чорних або коричневих колоній з характерним металевим блиском. При цьому спостерігається прокрашивание в чорний колір ділянки середовища під колонією. Виняток становлять деякі серологічні типи і групи С, які на цьому середовищі ростуть у вигляді ніжних світло-зелених або великих сірувато-зелених колоній.
Ізольовані колонії, характерні для бактерій з роду сальмонел, пересівають на Трьохцукровий агар Крумвіде-Олькеніцкого в модифікації Ковальчука штрихом по скошеної поверхні і уколом в стовпчик. Посіви поміщають на 12 - 16 год в термостат з температурою 37 В° С. p> При зростанні бактерій з роду сальмонел колір скошеної поверхні середовища Крумвіде-Олькеніцкого в модифікації Ковальчука - рожевий, стовпчик - жовто-бурий; газоутворення встановлюють по наявності тріщин і розриву стовпчика агару, сероводородообразующіе - викликають потемніння стовпчика.
Інші грамнегативні бактерії дають такі зміни кольору середовища:
Гј бактерії групи кишкової палички - вся середовище забарвлюється в синій або синьо-зелений колір з утворенням газу або без нього;
Гј бактерії з групи протея - середовище забарвлюється в яскраво-червоний колір, може утворитися чорний осад;
Гј шигели і збудники черевного тифу - косяк забарвлюється рожевий колір, стовпчик - в синій або синьо-зелений. p> Допускається замість середовища Крумвіде-Олькеніцкого в модифікації Ковальчука посів на вуглеводні середовища в короткий строкатий ряд, включаючи середовища з глюкозою, лактозою, сахарозою, манітом і мальтозою, напіврідкий агар уколом (для визначення рухливості) і бульйон Хоттінгера для визначення освіти індолу і сірководню. p> Для подальшої ідентифікації бактерій готують мазки, які забарвлюють за Грамом, мікроскопіруют і вивчають серологічні властивості мікроорганізмів шляхом постановки пробної аглютинації на предметному склі з агглютинируют адсорбированной полівалентної сальмонельоз-ної О-сироваткою. При отриманні позитивної реакції на склі з полівалентною сироваткою проводять ідентифікацію за допомогою монорецепторная аглютинуючих О-сироваток.
Встановивши серологічну групу, якій належать досліджувані бактерії, з допомогою Н-сироваток визначають тип бактерій. p> Обробка результатів
Виявлення рухомих (крім S. pullorum і S. gallinarum) грамнегативних паличок, що дають характерний зростання на елективних середовищах, неферментуючих лактозу і сахарозу, ферментуючих глюкозу і маніт з утворенням кислоти та газу (S. typhi suis НЕ ферментує маніт), що дають позитивну реакцію аглютинації з монорецепторними О-і Н-сальмонельозний сироватками, вказує на наявність бактерій з роду сальмонел.
Визначення коагулазопозитивні стафілококів
Сутність методу полягає у визначенні морфології, характеру росту на живильних середовищах і в здатності окремих стафілококів продукувати лецитиназу і коагулировать цитратную плазму крові кролика під впливом ферменту коагулазу.
Проведення аналізу
З розведення аналізованої суспензії продукту (1:10) проводять посіви на молочно-сольовий агар, що містить 65 г/дм 3 хлористого натрію, для виявлення пігменту або желточно-сольовий агар, що містить 65 г/дм 3 хлористого натрію, для виявлення лецитиназної активності.
Взвесь наносять на поверхню агару в кількості 0,2 см 3 і рівномірно розтирають по всій поверхні агарового середовища.
Посіви термостатують протягом 24 год при температурі 37 В° С і 24 години витримують при кімнатній температурі.
На поверхні живильного середовища колонії стафілокока мають вигляд плоских або злегка опуклих блискучих колоній з рівним краєм. При цьому на молочно-сольовому агарі краще виявляється пігмент (емалево-білий або золотистий), ...
