span>
Однак, не виключено, що зменшення надходження іонів Са 2 + в цитоплазму могло компенсуватися іншими механізмами, на які використані нами блокатори - CdCl 2 і BaCl 2 - не роблять істотного впливу.
По-перше, щодо Са 2 + -каналів плазматичної мембрани соми нейронів молюсків відомо, що серед них переважають канали N і L типу, проте зустрічаються і T канали [4, 38].
Оскільки Сd 2 + і Bа 2 + ефективно блокують потенціалзалежні L і N канали вхідного кальцієвого струму, не надаючи при цьому істотного впливу на Т канали [37], не виключено, що нестача Са 2 + після блокади його вхідного струму іонами Сd 2 + і Bа 2 + може частково компенсуватися за рахунок його надходження через Т-канали [38]. Однак останні зустрічаються в мембрані молюсків рідко [37].
В
Рис. 3.3 Вплив ізольованою і поєднаною з BaCl 2 експозиції саліцилатів кобальту (А, Б) і цинку (В, Г)
Примітка: концентрації розчинів: А, В - 0,5 10 -4 М; Б, Г - 0,5 10 -3 М. Горизонтальна жирна лінія на кожній діаграмі - значення фонових показників, прийняті за 100% .1 і 1 '- частота генерації імпульсів, 2 і 2' - амплітуда потенціалів дії, 3 і 3 '- швидкість сумарних входять іонних струмів, 4 і 4 '- швидкість сумарних виходять іонних струмів, 5 і 5' - мембранний потенціал; штрихом відзначені показники електричної активності нейронів після дії поєднаного розчину тестованого речовини з BаCl 2 . n - кількість нейронів в експерименті; * - p <0,05, - достовірні зміни показників контролю в порівнянні з фоном;? - P <0,05,?? - Достовірні зміни показників експерименту в порівнянні з контролем
А
В
Б
В
Рис.3.4 Ефекти ізольованою (1) і поєднаної з BaCl 2 (2) експозиції саліцилатів кобальту (А) та цинку (Б) у концентрації 0,5 10 -3 М
