без застосування бактерицидних засобів.
У разі кислої реакції блювотних мас їх перед посівом нейтралізують 10%-ним розчином бікарбонату натрію, промивні води центрифугують 15 хв. при 3000 об / хв. і в подальшому використовують осад. У разі неможливості центрифугування допускається висів нативного матеріалу.
Жовч (дуоденальне вміст) збирають у стерильні пробірки. При цьому окремо збирають дуоденальний вміст, міхурну жовч і жовч із жовчних проток (порції А, В і С відповідно).
Сечу для дослідження збирають після ретельного туалету. Першу порцію сечі не беруть для аналізу, решту збирають в стерильний посуд і доставляють в лабораторію. Сечу центрифугують 15 хв. при 3000 об / хв. Для дослідження використовують осад. Допускається висів нативного матеріалу.
5.2 Підготовка до дослідження клінічного матеріалу
Доставлені в лабораторію зразки клінічного матеріалу готують до посіву в середовища збагачення і на диференційно-діагностичні середовища
Блювотні маси, промивні води шлунка і сечу центрифугують.
5.3 Методи виділення
Ефективність проведеного дослідження, спрямованого на виділення сальмонел з різних матеріалів, в першу чергу залежить від застосування відповідних середовищ збагачення і адекватних диференційно-діагностичних середовищ.
В даний час освоєно комерційний випуск більшості поживних середовищ рядом виробників, що мають реєстраційні посвідчення та сертифікати виробництва. У тих випадках, коли рекомендовані середовища відсутні, їх готують в лабораторних умовах відповідно до ГОСТ Р 52814-2007 або МУ з мікробіологічної діагностики захворювань, що викликаються ентеробактеріями, 1984 р. Контроль поживних середовищ здійснюють відповідно до МУК 4.2.2316-08.
Рекомендовані середовища збагачення діляться на неселективні первинні (забуферений пептонна вода) і середовища селективного збагачення (магнієва, селенітовий, Мюллер-Кауфмана, Раппапорт-Вассіліадіс, селеніт-цистиновими). ??
Дифференциально-діагностичні середовища в свою чергу діляться на слабо селективні і високо селективні. До перших відносяться Ендо агар, Мак-Конки агар, діамант-грюн агар. До других - Плоскирева агар, SS-агар, ксилози-лізин деоксихолат агар, вісмут-сульфіт агар.
Характер зростання сальмонел на зазначених середовищах наведено в табл. 1
Таблиця 1. Характер зростання сальмонел на різних диференційно-діагностичних середовищах
Назва средиВід колоній сальмонелл1. Діамант-грюн агарРозовие2. Мак-Конки агарБесцветние3.Ксілозо-лізин-деоксихолат агар) Чорні з безбарвним обідком за винятком S.Typhi, які ростуть у вигляді світлих колоній4. Сальмонела шигелла агар (SS) З чорним центром5. Вісмут сульфіт агарЧерние, середа під колонією профарбовується. Деякі серовар сальмонел (S.Para A, S.Gallinarum можуть бути злегка зеленуватими) 6. агар Ендо Безбарвні, злегка розовие7. Агар ПлоскіреваБесцветние, злегка рожеві, іноді з чорним центром
Після підготовки матеріалу від хворих до дослідження виробляють його посів на середовище збагачення.
непосредс?? Венний висів матеріалу з середовища збагачення до її інкубування в термостаті...
